Q1:转染效率低
可能的原因 | 解决方案 |
质粒DNA、siRNA或转染试剂,在含有血清的培养基中稀释,或在血清存在的情况下形成复合物。 | 使用无血清培养基稀释质粒DNA、siRNA和转染试剂。 |
稀释时间或复合培养期太短。 | 我们建议将DNA和转染试剂分别稀释并孵育5分钟。将稀释的试剂一起加入并孵育20分钟以获得最佳性能。 |
转染的质粒DNA或siRNA降解或质量较差。 | 确保用于转染的质粒DNA或siRNA具有高质量。 |
培养基中存在抑制剂。 | 不要在生长培养基或用于制备DNA的培养基:转染试剂复合物中使用抗生素,EDTA,柠檬酸盐,磷酸盐,RPMI,硫酸软骨素,透明质酸,硫酸葡聚糖或其他硫酸化蛋白多糖。 |
用于测定效率或表达的分析中存在问题。 | 使用报告基因来测量转染效率。 |
细胞无法识别载体上的启动子/增强子。 | 验证载体构建体上的启动子/增强子是否与靶细胞类型兼容。 |
随着时间的推移,细胞发生了变化,或者分裂条件发生了变化。 | 如果转染性能突然下降,可能与细胞有关。 我们建议以一致的时间表分裂和电镀细胞,并保持细胞密度不会太稀疏或过密。 过度分裂也会降低转染性能。 |
Q2:转染后的细胞存活率低
可能的原因 | 解决方案 |
在转染期间,生长培养基中添加了抗菌剂。 | 不要在生长培养基中使用抗生素,如氯喹、青霉素或链霉素,因为在转染过程中,细胞更容易被抗生素渗透,可能会产生毒性。 |
转染试剂储存不当。 | 我们建议将转染试剂储存在4°C。冷冻或在室温下储存,可能会降低试剂的活性。 |
复合物未在生长培养基中未充分混匀。 | 在向培养基中加入转染复合物后,确保板或孔完全混合。 |
随着时间的推移,细胞发生了变化,或分裂条件发生了变化。 | 如果转染性能突然下降,可能与细胞有关。 我们建议以一致的时间表分裂和电镀细胞,并保持细胞密度不会太稀疏或过密。 过度分裂也会降低转染性能。 |
阳离子脂质试剂被氧化。 | 不要过度涡旋或搅动阳离子脂质试剂,这可能形成阳离子脂质试剂过氧化物。 |
选择性抗生素加入过于迅速。 | 当建立稳定的细胞系时,允许细胞在加入选择性抗生素之前至少72小时表达抗性基因。 |
Q3:转染结果不可重复
可能的原因 | 解决方案 |
随着时间的推移,细胞发生了变化,或者分裂条件发生了变化。 | 如果转染性能突然下降,可能与细胞有关。 我们建议以一致的时间表分裂和电镀细胞,并保持细胞密度不会太稀疏或过密。 过度分裂也会降低转染性能。 |
转染在不同细胞汇合或不同DNA与转染试剂的比例下进行。 | 转染性能的可重复性取决于细胞分裂、电镀和转染中采用一致的方案(相同的DNA与转染试剂比率)的一致性。不同的DNA制剂或培养基的改变也可能改变转染性能。 |
卡梅德科技致力于为客户提供专业的转染实验服务,满足其在细胞生物学和分子生物学研究中的需求。我们拥有经验丰富的团队和先进的实验设施,能够进行各种类型的转染实验,包括基因传递、siRNA转染、miRNA转染、CRISPR/Cas9介导的基因编辑等。我们将根据客户提供的细胞类型和目的,设计并优化适合的转染方案,并进行实验操作、数据分析和报告撰写。无论客户是进行基础研究还是药物筛选,我们都能够为其提供高质量、可靠的转染实验服务,为其科研工作提供重要支持。