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基因敲除细胞系服务
基因敲除细胞系服务介绍

细胞系(cell line)指原代细胞培养物经首次传代成功后所繁殖的细胞群体,也指可长期连续传代的培养细胞。根据细胞系的生存特性,若其生命周期有限,则被称为有限细胞系;反之,若细胞系获得了无限的繁殖能力,则称之为连续或无限细胞系。

细胞系有助于研究细胞功能、生理和生化特性,进行细胞和分子生物学实验。稳定的细胞系使研究人员能深入探讨基因功能、疾病机制、药物筛选,为生命科学提供关键工具。此外,细胞系能产生大量同质细胞,保证实验的准确性和可重复性。

卡梅德科技搭建的细胞基因编辑平台,依托先进的CRISPR cas9技术和完善的细胞培养体系,为客户提供包括HEK293、CHO细胞、肿瘤细胞、永生化细胞、IPS/ES等各类细胞的基因敲除服务。此外,还提供了稳转细胞株开发,细胞规模化生产、重组蛋白制备等系列下游实验服务。

细胞类型

典型细胞

质量控制

周期

肿瘤细胞

Jurkat、HepG2、SK-MES-1、hepa1-6

qPCR检测、免疫印迹

快至4周

非癌永生化细胞

HK-2、AC16

干细胞

H1、H9、iPSC

交付:Cell Pool或单克隆纯合子细胞系、实验报告;


内容

细胞基因敲除的方法有gRNA质粒模式,慢病毒模式,RNP模式。RNP模式核心在于将双cas9蛋白与sgRNA形成RNP(核糖核蛋白)体系,二者在体外组装形成RNP复合物,通过电转染方式将其转入待编辑细胞,通过同源定向修复或者非同源末端重组实现基因敲除。慢病毒模式,是一种将CRISPR/Cas9基因编辑系统通过慢病毒载体传递至宿主细胞内,以实现基因敲除的技术。慢病毒载体因其稳定的基因整合特性和广泛的细胞转染能力,成为一种理想的基因传递工具,可显著提升对目标细胞的基因编辑效率。

条件性基因敲除技术用于研究可能致命的基因。Cre-LoxP系统是常用的敲除技术。在条件性敲除中,目标基因两侧会被插入LoxP位点,形成“floxed”基因。在没有Cre酶的情况下,基因保持活性。当引入Cre酶时,Cre酶会识别LoxP位点并切除它们之间的基因序列,从而敲除基因。

卡梅德科技可根据客户需求设计小片段敲除、大片段敲除、移码突变等基因敲除细胞方案。小片段敲除将gRNA设在外显子两端的内含子中;移码敲除将gRNA设在外显子上;大片段敲除将整个基因的编码序列敲除,达到大片段敲除的效果。

步骤

服务内容

周期

Step1 sgRNA设计

(1)客户提供目标基因;

(2)设计并合成sgRNA;

40

Step2 CRISPR Cas9相关载体构建载体

(1)构建含sgRNA序列的重组载体;

(2)重组载体测序验证;

Step3 载体共转染细胞

(1)重组载体共转染细胞

(2)药物筛选;

(3)pool效率验证;

Step4 单克隆化

(1)流式细胞术分选出单克隆基因编辑细胞;

Step5 切除效率验证

(1)sanger测序、WB验证鉴定切除效果;

Step6 细胞冻存

(1)加DMSO液氨冻存;


流程

细胞基因敲除服务流程图-卡梅德科技.jpg

优势

细胞基因敲除服务优势-卡梅德科技.png

案例展示

服务案例展示.png

hepa1-6细胞系T7EI检测结果

常见问题解答

1.如何进行基因敲除细胞单克隆的挑选?

答:可通过有限稀释法将单细胞铺在96孔板中,培养一段时间后显微镜下观察单克隆形成情况,待单细胞扩增到一定数量再进行单克隆挑选和鉴定。

2.构建基因敲除细胞系的难点是什么?

答:包括递送方式、培养、转染和单克隆制备困难。递送方式建议选择RNP,效率高且低脱靶,摸索细胞培养条件,优化转染方法和单克隆,确保敲除实验前获取最优条件。

3. 使用CRISPR-Cas9体系时,如何确定细胞的转染效率?

答:荧光蛋白报告基因:通过转染EGFP mRNA或其他荧光蛋白mRNA来确定细胞的转染效率。

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